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细胞免疫组化不着色的原因及解决方案
更新时间:2025-11-28 点击次数:15

一、抗原修复不充分

原因:甲醛固定导致抗原表位交联封闭,或修复液pH值错误、时间不足。

解决:

使用pH 6.0柠檬酸盐缓冲液(多数抗体适用)。

高压修复(121℃, 2~3分钟)优于微波修复。


二、一抗问题

原因:浓度过低、孵育时间过短或抗体失效。

解决:

进行浓度梯度测试(如1:50~1:400)。

设立阳性对照验证抗体活性。


三、组织固定不当

原因:固定时间过长(>48小时)或固定液浓度过高。

解决:

推荐10%中性福尔马林固定6~24小时。

及时固定(大标本需切开)。


四、操作失误

原因:组织干燥、切片过厚或试剂覆盖不全。

解决:

保持切片湿润,厚度控制在3~4μm。

使用DAKO笔圈画组织防止液体流失。


五、DAB显色异常

原因:显色时间过长或DAB变质。

解决:

现配现用DAB,显色时间控制在1~5分钟。

显微镜下监控显色过程。


六、其他因素

内源性酶未阻断:用3% H2O2处理10分钟(室温)。

脱钙组织处理:改用EDTA脱钙液避免抗原破坏。

若问题持续,建议检查抗体特异性或重新取样。

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